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  • 用生物素-親和素復合物觀察選擇性標記糖蛋白

    實驗材料

    蛋白樣品

    試劑、試劑盒

    醋酸鈉丙酮

    實驗步驟

    一、過碘酸鈉氧化糖蛋白樣品

    1. 在 0.1 mol/L 醋酸鈉 pH 4.5 緩沖液(50 mmol/L 磷酸鈉,pH 7.4 ) 中制備蛋白溶液,在冰上預冷。

    2. 用水制備新鮮的 0.5 mol/L 過碘酸鈉原液,暗處保存,并在冰上預冷。

    3. 加足夠新鮮的過碘酸原液至蛋白樣品中使成至 10 mmol/L ( 1 mmol/L )。

    4. 在室溫下避光保存 1 小時,或在 4℃ 保存 4~24 小時(冰上 30 分鐘)。

    5. 加入 1/10 體積的 0.5 mol/L 1,2-亞乙基二醇終止反應。

    6. 用 TCA/DOC 沉淀蛋白,按照 PNGaseF 方案第4步所述進行。

    7. 冷丙酮清洗沉淀物兩次。或者通過對 PBS 透析去除 1,2-亞乙基二醇。至此,樣品可以進行生物素化。

    二、用生物胞素酰肼生物素化醛基

    1. 在 DMSO ( 或 DMF) 中制備生物胞素酰肼的貯備液,冷凍保存。

    2. 將過碘酸氧化后獲得的沉淀懸浮于 pH 7.4,100 mmol/L 的磷酸鈉中,并滴定到 pH 7 ( 用 pH 試紙和每 0.5 μl —份的 1 mol/L 的 Na2HPO4)。

    3. 加 1/10 體積的生物胞素酰肼原液,在室溫下保溫樣本 1 小時。

    4. 按照 PNGaseF 方案中第4步所述的方法用 TCA/DOC 沉淀生物素化樣品,以制備 SDS-PAGE 樣品。

    三、用過碘酸生物胞素酰肼檢測固定于膜印跡上的蛋白

    1. 在 PBS 中,用 1% BSA 封閉固定有蛋白的 PVDF 膜。

    2. 用 PBS 清洗印跡膜三次,用 0.1 mol/L pH 4.5 的醋酸鈉清洗一次。

    3. 膜在含 10 mmol/L 過碘酸鈉的 0.1 mol/L pH 4.5,醋酸鈉溶液中,室溫下避光保溫 1 小時。

    4. 用 PBS 清洗印膜 3 次。

    5. 用含 3 μg/ml 的生物胞素酰肼的 PBS 溶液覆蓋在印膜上,放在室溫下 1 小時。

    6. 用 PBS 清洗 3 次,并且用鏈親和素-HRP 進行染色。

    展開


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