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  • 發布時間:2019-04-18 10:22 原文鏈接: 聚丙烯酰胺凝膠盤狀電泳

    實驗概要

    本實驗介紹了血清蛋白聚丙烯酰胺凝膠盤狀電泳的原理、試劑配制、操作步驟及注意事項等。

    實驗原理

    本實驗利用聚烯酰胺凝膠作電泳支持物。電荷和分子大小不一的各種血清蛋白質通過濃縮效應、電荷效應、分子篩效應而被精細地分離。由于具有以上三種效應,所以此方法分離效果好,分辨率高。血清蛋白在醋酸纖維素薄膜電泳僅能分成5~7個組份,而在聚丙烯酰胺凝膠盤狀電泳中可分出12~30個組份。

    主要試劑

    試劑

    試劑號

    名稱

    配制方法

    pH

    1

    分離膠緩沖液

    1N HCl 48.0ml Tris 36.3g 加蒸餾水到100ml

    8.9

    2

    單體交膠劑

    丙烯酰胺30.0g 甲叉雙丙烯酰胺0.8g 加蒸餾水到100ml


    3

    催化劑

    10%過硫酸銨(臨用前配制)100mg/ml


    4

    加速劑

    四甲基乙二胺(TEMED)1ml加蒸餾水稀釋到10ml


    5

    濃縮膠緩沖液

    1N HCl 48.0ml Tris 5.98g加蒸餾水到100ml

    6.7

    6

    電極緩沖液

    甘氨酸28.8gTris 6.0g加蒸餾水至100ml臨用前按1∶10比例稀釋

    8.3

    7

    示蹤染料溶液

    溴酚蘭0.05g加蒸餾水溶解至100ml


    8

    固定染色液

    考馬斯亮蘭G25010mg 無水乙醇4.7ml 磷酸8.5ml 定容到100 ml


    凝膠溶液配制表

    試 劑

    分 離 膠 溶 液(ml)

    濃 縮 膠 溶 液(ml)

    1號

    1.25

    ——

    2號

    2.5

    1

    5號

    ——

    1.25

    蒸餾水

    6.05

    7.35

    3號

    0.05

    0.1

    4號

    0.15(1∶10稀釋液)

    0.3(1∶10稀釋液)

    總體積(ml)

    10

    10

    濃度(g%)

    7.7

    3.0

    附注:凝膠聚合速度受溫度影響較大,溫度低時,聚合速度減慢,需適當調整3號及4號試劑的用量,達到在30分鐘左右聚合。

    主要設備

    1. 園盤電泳槽

    2. 電泳儀

    3. 玻管(10×15px)

    4. 50μl微量注射器、5ml注射器

    5. 250px長的局麻針頭、18號針頭

    6. 長細滴管

    7. 小澆杯

    8. 橡皮管、吸耳球等

    實驗材料

    血清蛋白

    實驗步驟

    1. 凝膠柱的制備:

       1) 取已準備好的10×15px的玻管,從一端量至175px處,用玻璃臘筆劃線。起始端用膠布包封好后,插入橡皮塞中,垂直放好。

       2) 分離膠的制備:

           a.  按分離膠配制表的比例(附后),取1號、2號試劑和蒸餾水加入一小燒杯中,混合后,再加入3號和4號試劑,混勻后即成為分離膠溶液(此溶液約在半小時內聚合為聚丙烯酰胺凝膠,故應盡快操作。如室溫較高時,為防止過快聚合,可放置冰浴中操作。或根據聚合速度的快慢,適當調整TEMED的加入量)。

          b. 用5ml注射器、18號針頭或用長細滴管吸取分離膠溶液,將其沿玻管管壁注入玻管,直至175px劃線平面。

          c. 用長細滴管吸取蒸餾水,沿管壁在分離膠的液面上加注12.5px高的水層。加水時必須緩慢細流,盡量減少膠液表面的震動與混合。(加注水層是為了使凝膠聚合后的表面平整而不致出現彎月形,并能使凝膠與空氣隔絕。這一步很重要,它將直接影響分辨率與帶形)。

          d. 將加注好的凝膠管靜置1小時,以進行聚合反應。在聚合過程中,起初凝膠與水層的界面逐漸消失,待膠體形成后,其界面又將重新可辨。這一現象可用來觀察判斷凝膠的聚合是否完成。

       3) 濃縮膠的制備

          a. 按濃縮膠配制表的比例取2號、5號試劑和蒸餾水加入另一小燒杯中,混合后,再加入3號和4號試劑,混勻后即成為濃縮膠溶液。(在制備濃縮膠時,也常用核黃素催化的光聚合來代替過硫酸銨催化的化學聚合作用)。

          b. 用滴管和濾紙小心地吸去已聚合好的分離膠膠面上的水液。注意切勿觸及膠面。

          c. 用長細滴管或注射器吸取濃縮膠溶液,在分離膠膠面上沿玻管壁小地注入0.5~25px高的膠液。然后同樣沿玻管壁緩慢細流地加入12.5px高的蒸餾水。靜置一小時后即可使用。

    在加樣之前先用滴管或濾紙小心地吸去濃縮膠膠面上的水液。

    2. 加樣:

    用50μl的微量注射器,取12μl血清,加12μl的40%蔗糖溶液(1∶1稀釋),再加入40μl0.05%溴酚蘭指示劑,混勻。每管中加入該混合液16μl,共可加4管。每管實際加入純血清3μl,含蛋白質196μg。(血清蛋白質含量為6.2克/100毫升血清)

    若需增減管數,亦照此加樣比例推算。

    3. 電泳

       1) 將加樣完畢的凝膠管上端垂直插入上電極槽底板的橡膠塞孔中。并去掉下端的橡皮塞和膠布。

        2)  先用長細滴管吸取電極緩沖液,在已插好的凝膠管樣品液面上,小心地逐管加滿電極緩沖液。然后將電極緩沖液慢慢地倒入上、下電極槽中。注意避免和排除凝膠管的上、下管口內留有氣泡,否則會影響導電。電極緩沖液的加入量,上槽以電極能完全浸入為宜,下槽以凝膠管浸入3/5為宜。

       3) 將上槽的電極接電泳儀的負極,下槽的電極接電泳儀的正極。先調節電流為1mA/管,待示蹤染料進入分離膠后,再調節電流為2~3mA/管。待示蹤染料遷移至距管下口12.5px時,切斷電源,電泳完畢。

    4. 剝膠

    取下凝膠管,用帶250px長針頭的注射器吸取蒸餾水作潤滑針。將針頭小心插入管壁與膠柱之間,一邊注水,一邊使針頭緊貼管壁慢慢呈螺旋式前進。如果一頭不行,再在另一頭按同樣的方法剝離,直至膠柱與管壁分開,從玻管中滑出。如膠柱不能滑出,可用洗耳球從一端加壓吹出。

    5. 固定、染色及漂洗:

    將剝出的膠柱浸入8號試劑60℃水浴30-60分鐘,進行染色,然后用清水沖洗掉多余的染料。

    注意事項

    1. 丙烯酰胺和甲叉雙丙烯胺是神經性毒劑,并對皮膚有刺激作用,注意避免直接接觸。大量操作時應在通風櫥中進行。

    2. 丙烯酰胺和甲叉雙丙烯酰胺溶液應裝在棕色瓶中,置冰箱內(4℃)保存。可貯存1~2月。測定pH值(4.9~5.2)可檢查其是否失效。失效液不能聚合。

    3. TEMED要密封保存,過硫酸銨溶液最好當天配制,以防止氧化失效。

    4. 凝膠的聚合速度與溫度關系很大,必須根據實驗時的溫度調整3號、4號試劑的用量,以使凝膠在30分鐘內聚合。


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