小生剛開始做細胞培養不久,對于一個細胞培養的新手來說,最怕的就是細胞受污染。所以本人翻閱了一些園子里的關于細胞培養過程中的污染問題的貼子,結合平時查閱資料以及這些天的細胞培養的一些心得,整理出一些關于細胞污染的東東與大家一起分享。希望能對剛踏入細胞培養的同仁們有些幫助,也希望各位達人作出補充,大家共同進步。
概述
凡混入細胞培養環境中對細胞生存有害的成分和造成細胞不純的異物都應視為污染,細胞污染不能完全被消除,但能減少其發生的頻率和后果的嚴重性。細胞污染根據污染源主要可以分為物理性,化學性和生物性污染。
一、物理性污染的來源、危害及預防
物理性污染常常被人們所忽視或被籠統地歸為化學性污染。物理性污染通過影響細胞培養體系中的生化成分,從而影響細胞的代謝。培養環境中的物理因素,如溫 度、放射線、振動、輻射(紫外線或熒光)會對細胞產生影響 。細胞、培養液或其它培養試劑暴露于放射線、輻射或過冷過熱的溫度中,可以引起細胞代謝發生改變,如細胞同步化、細胞生長受抑制甚至細胞死亡。通過實驗室 的合理設計及建立規范的操作規程,可以減少環境中物理因素對細胞的影響。孵箱應放在溫度較恒定的環境中,周圍不能放置能引起機械振動的設備,如離心機。培 養液及培養試劑應放在固定的位置,為避免光照試劑不能放在玻璃門的冰箱中,試劑周圍不能放同位素。培養液從冰箱中取出后應在室溫中放置一段時間后再進行實 驗,以避免過冷的溫度對細胞的影響。
二、化學性污染的來源、危害及預防
培養環境中許多化學物質都可以引起細胞的污染 。化學物質并不總是抑制細胞的生長,某些化學物質如激素就可促進細胞的生長。不同細胞對化學物質污染的反應是不一樣的。未純化的物質、試劑、水、血清、生 長輔助因子及儲存試劑的容器都可能成為化學性污染的來源。細胞培養的必需養分,如氨基酸,若濃度超過了合適的范圍,也會對細胞產生毒性。同樣,不同細胞系 其最佳培養條件下對血清和緩沖液的要求是不一樣的,在培養中應嚴格控制。玻璃制品清洗過程中殘留的變性劑或肥皂(通常殘留在瓶蓋的內表面)是最常見的化學性污染。水是唯一一種在凝固時 膨脹的化合物。因此在選擇凍存細胞的容器時應考慮到這個因素。容器因水的膨脹而發生破裂是引起試劑污染的重要原因。
為了避免金屬離子、有機分子、細胞內毒 素等物質對水的污染,在配制液體,清洗容器時必須使用不含雜質的超純水 。需要注意的是,超純水放置過久其純度會下降。在高壓蒸氣滅菌及蒸餾水時水經常被污染,因為高壓蒸氣鍋及純水機的常規維護后可能有少量的化學物質殘留。為了保證水的純度,我們應采取措施盡量避免化學物質的殘留。動物血清是細胞培養中常用的天然培養基,但血清又是潛在的生物及化學污染的來源。由于血清采集于多個動物,而且不同廠商的生產工藝及質量各不相同,因此血 清中許多成分的濃度存在很大的變異。血清對不同細胞的促生長能力及毒副作用取決于這些細胞的分化功能、組織來源及培養基的成分等因素。在進行一系列實驗 時,為了保證實驗的可重復性,最好選用同一批次的血清。
培養液、培養附加成分、試劑 培養液、培養附加成分、試劑都可能成為化學性污染的來源。細胞培養使用的所有物質都應是高純度的,并經過權威機構的鑒定,實驗者本人也應對上述成分進行 純度鑒定。同時,正確配置和儲存培養液及試劑也是非常重要的,應該采取標準的操作步驟,避免液體體積計算錯誤,混用類似化合物等錯誤。培養器皿及容器 細胞培養過程中會使用到各種不同的培養器皿及容器。培養器皿的大小,構形設計可能會影響到培養中氣體交換、濕度、培養液的pH值和細胞生長密度。培養器 皿的工藝及滅菌過程中的差異可能對培養體系產生影響。塑料制品在生產過程中可能殘留一些有毒成形劑,生產工藝的不同可能引起器皿表面附著能力的不同。儲存 不同物質時應選用合適的塑料或玻璃容器,因為酒精、強酸、強堿能夠溶解塑料或玻璃的某些成分。
三、微生物污染
由于體外培養的細胞自身沒有抵抗污染的能力,而在培養基中加抗生素的抗污染能力也是有限的,因而細胞微生物污染一旦發生往往是無法挽救的。一般在細胞受到污染早期或污染較輕時,能及時處理并除去污染物,部分細胞還有可能得到挽救。但當細胞持續在污染環境中生長時,輕者細胞生長緩慢,分裂相減少,細胞變得粗糙,輪廓增強,胞漿中出現較多的顆粒物質;較重的細胞增殖停止,分裂相消失,細胞質中出現大量堆積物,細胞變圓或崩解,從瓶壁脫落。
不同的微生物污染物對細胞的影響也有差別,微生物中支原體和病毒對細胞形態和技能的影響是長期的,緩慢的和潛在的。而霉菌和細菌增殖迅速,能在很短的時間內抑制細胞生長或產生有毒物質殺滅細胞。
四、霉菌污染
表現:真菌的種類很多,污染的多是曲霉菌,白色念珠菌,酵母菌,黑霉菌,孢子菌等。霉菌污染后多數在培養液中形成淡黃色或是白色的漂浮物,一般肉眼可見,較易被發現,短期內培養液多不變混濁。倒置顯微鏡下可以看見細胞之間有縱橫交錯穿行的絲狀,樹枝狀或管狀菌絲,并漂浮在培養液中。很多菌絲在高倍鏡下可以看見鏈狀排列的菌株。念珠菌及酵母菌菌株呈卵圓形,散在細胞上及細胞周邊生長。有時通過顯微鏡可能會發現在培養瓶外壁生長的菌絲,較易誤認為污染。發現瓶外的菌絲后應及時用酒精擦拭干凈。
處理:首先,需確定污染物是細菌、真菌、支原體,還是酵母。現在你確認是霉菌污染。因此,盡快把污染細胞與其它細胞系隔離開,同時需要對實驗過程中所用的器材和試劑做處理。
一般來說,高濃度的抗生素和抗霉菌素都可能對細胞或細胞系有毒性作用,因而,做劑量反應實驗確定抗生素和抗霉菌素產生毒性的劑量水平。這點在使用抗生素如兩性霉素B和抗霉菌素如泰樂菌素時尤其重要。
下面是推薦的確定毒性水平和消除培養污染的實驗步驟。
1)在無抗生素的培養基中消化、計數和稀釋細胞,稀釋到常規細胞傳代的濃度。
2)分散細胞懸液到多孔培養板中,或幾個小培養瓶中。在一個濃度梯度范圍內,把選擇抗生素加入到每一個孔中。例如,兩性霉素B推薦下列濃度,0.25,0.50,1.0,2.0,4.0,8.0 mg/ml。
3)每天觀測細胞毒性指標,如脫落,出現空泡,匯合度下降和變圓。
4)確定抗生素毒性水平后,使用低于毒性濃度2-3倍濃度的抗生素的培養液培養細胞2-3代。
5)在無抗生素的培養基中培養細胞一代。
6)重復步驟4。
7)在無抗生素的培養基中培養4-6代,確定污染。
五、細菌污染
細菌污染較常見的有大腸桿菌,白色葡萄球菌,假單孢菌等。加用抗菌素的培養液可預防和排除個別一般少量細菌的污染。一旦發生細菌污染很容易發現,多數情況下培養液短時間內變黃,表明有大量酸性物質產生,出現明顯渾濁現象;有時靜置的培養液起初不混,但稍加震蕩,就有許多混濁物漂起。倒置顯微鏡下觀察,可見培養液中有大量圓球狀顆粒物漂浮,有時在細胞表面及周圍有大量細菌存在,細胞停止生長并有中毒表現。必要時可取少量培養液涂片染色檢查以明確細菌種類;有的培養液改變不明顯而有疑似污染,亦可向肉湯培養基內地入少量培養液,37度培養以檢測。
處理:一般用抗生素的常用量的5~10倍作沖擊療法,用藥24~48小時后再換常規培養液,有時在早期污染時此法有效。細胞培養中用抗生素多為預防細菌污染,一半多聯合應用。一旦發生污染后再使用抗生素常常難以根除,有的抗生素只有抑菌作用而無殺菌效應。
園子中的一些細菌污染后的處理方案:
http://www.dxy.cn/bbs/actions/archive/post/1250527_1.html
http://www.dxy.cn/bbs/actions/archive/post/5810723_1.html
http://www.dxy.cn/bbs/actions/archive/post/6023160_1.html
培養箱細菌污染的處理:
http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=66&id=8061768&tpg=1&ppg=1&sty=1&age=0#8061768
六、支原體污染
支原體是一種大小介于細菌和病毒之間(最小直徑0.2um)并獨立生活的微生物.約有1%可通過濾菌器。支原體無細胞壁形態呈高度多形性.可為圓形、絲狀或梨形。
支原體形態多變,在光境下不易看清內部結構。電鏡下觀察支原體膜為三層結構.其中央有電干密度大的密集顆粒群或絲狀的中心束。支原體多吸附或散在于細胞表面和細胞之間。橫斷面與細胞微絨毛相似,但微絨毛電子密度比支原體小,且中央無顆粒群或中央束。
支原體代謝需固醇類物質、部分種類需要精氨酸、O 2或葡萄糖,每一種支原體都有自身持點。多數支原體適合于偏堿條件下生存(PH7.6—8.0),對酸耐受性差。對熱比較敏感,對一般抗生素不敏感。
支原體污染細胞后.培養液可不發生混濁.多數情況下細胞病理變化輕微或不顯著,細微變化也可由于傳代、換液而緩解.因此易被忽視。但個別嚴重者,可致細胞增殖緩慢.甚至從培養器皿脫落。
為確定有無支原體污染可做如下檢酗:
①相差顯微境檢測:將細胞按種于事先放置于培養瓶內的蓋玻片上,24h后取出,用相差油鏡觀察.支原體呈暗色微小顆粒位于細胞表面和細胞之間。
②熒光染色法:熒光染色用能與DNA特異性結合的熒光染料Hoechst 33258,可使支原體內含有的DNA著色,染色后用熒光顯微鏡觀察。具體方法如下:首先將細胞接種蓋玻片上,在細胞未長滿前取出玻片,用不合酚紅的 Hanks液漂洗一下,用l: 3醋酸甲酵固定10Min,然后用生理鹽水漂洗.置于用生理鹽水配濃度為50pg/ml的Hoechst 33258中染色10min。染色后用蒸溜水洗1—2min.向細胞面滴加pH5.5磷酸緩沖液數滴,然后置熒光顯微鏡下觀察。鏡下支原體為散在于細胞同 圍或附于細胞膜表面的亮綠色小點。
③電鏡檢查;用掃描電鏡方法簡便快速.也可以利用透射電鏡。
④DNA分子條文檢查或支原體培養等方法:檢出率高.但方法較為復雜
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處理:(1) 加溫:根據支原體對熱敏感的特點,將受支原體污染的細胞放在41度作用4~5小時,最長不超過18小時,以殺滅支原體。但如此高的溫度對細胞生長本身也有影響,因而在實驗前先用少量細胞膜所最適合的溫度和時間,以盡可能保證殺滅支原體而細胞本身又不受損傷。