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  • 發布時間:2020-08-11 13:00 原文鏈接: 用制備凝膠電泳純化寡核苷酸實驗

    試劑、試劑盒 丙烯酰胺雙丙烯酰胺尿素過硫酸銨 NNN'N'-四甲基乙二胺合成的互補寡核苷酸仲丁醇(2-丁醇)二乙醚 NaOAcMgCl2 乙醇TBE 甲酰胺加樣緩沖液 TE

    儀器、耗材 SpeedVac 旋轉濃縮儀

    實驗步驟

    材料與設備


    丙烯酰胺


    雙丙烯酰胺


    尿素


    過硫酸銨(10%;w/v)


    N,N,N',N'-四甲基乙二胺 (TEMED)


    合成的互補寡核苷酸(含待分離序列特異性 DNA 結合蛋白的識別序列)


    仲丁醇(2-丁醇)


    二乙醚


    NaOAc(3mol/L)


    MgCl2(1mol/L)


    乙醇(100% 和 75%;v/v)


    SpeedVac 旋轉濃縮儀(SavantInstruments,Inc.)


    試劑


    TBE(10x)


    甲酰胺加樣緩沖液


    TE


    (配方,見“試劑的配制”,P.131~138.)


    操作程序


    聚丙烯酰胺凝膠的制備


    1) 制備 20-cm×40-cm×1.5-mm 的凝膠,有 4 個寬 3 cm 的加樣孔。對長度范圍約為 10~45 堿基的寡核苷酸,宜采用 16% 的聚丙烯酰胺/尿素凝膠。對更長的寡核苷酸,可釆用 8% 或 6% 的聚丙烯酰胺/尿素凝膠。


    2) 為制備 16% 的聚丙烯酰胺/尿素凝膠,可按如下配方混合:

    丙稀酰胺 (38%;w/v)/雙丙烯酰胺 (2%;w/v)             50 ml

    TBE(l0x)                                                                12.5 ml

    尿素                                                                       62.5 g

    H20                                                                        17 ml

    總體積                                                                   125 ml


    3) 過濾,短暫脫氣,然后加 750ul 10%(w/v) 過硫酸銨和 50ul TEMED。


    4) 讓凝膠聚合≥30 min, 再在 30W 下凝膠預電泳至少 1h。

    注:凝膠的預電泳有助于去除過量的過硫酸鹽離子,后者會使 DNA 發生降解。


    5)—塊凝膠可加的 DNA 童能制備出 1umol(約 1~2 mg) 合成寡核苷酸(所有 4 個 3-cm 加樣孔都用上,每孔含 0.25umol 樣品。這個 DNA 量大約是能加于凝膠而不致超載的最高限量。

    注:DMA 在 16% 凝膠中的遷移性如下: 溴酚藍可與長約 10 個堿基的寡核苷酸共遷移,二甲苯腈藍可與長約 30 個堿基的寡核苷酸共遷移,若寡核苷酸的長度為 25~35 個堿基,則建議在甲酰胺加樣緩沖液中只加入溴酚藍。


    樣品的制備


    1) 用適量甲酰胺加樣緩沖液溶解寡核苷酸, 恰可使 50ul 樣品加入一 3-cm 加樣孔中。


    2)65℃ 下加熱樣品 15 min, 以消除 DNA 中的二級結構。


    3) 加樣. 并將凝膠置于 30W 下進行電泳。溴酚藍下行至凝膠的 3/4 處約需 4 h, 此條件足以純化長為 15~30 堿基的寡核苷酸。


    DNA 的回收


    1)紫外 (UV) 造影鑒定主帶 (通常為最大的寡核苷酸,但有時為次大的寡核苷酸)。

    注:紫外造影操作如下。將聚丙烯酰胺凝膠置于兩張塑料包裝膜(如 Sarnn 包裝膜)中間,再將凝膠放在一塊含有熒光材料的薄板(如含有熒光色素的薄層層析板或放射自顯影屏)上。用手持式紫外燈將長波長的紫外光照在凝膠上(時間要短!)。除 DNA 帶所在位置外,熒光材料板上的其他所有地方都會觀察到熒光(因為 DNA 能吸收紫外光)。這樣,在 DNA 帶下會出現影子。用鋼筆在 DNA 帶周圍快速劃下輪廓,然后在普通光下切下凝膠中對應的含有 DNA 的部分。


    2) 小心地用刀片將 DNA 帶切下,要努力避免將凝膠切碎(不要將膠條研成小碎片)。


    3) 將凝膠塊浸泡在 5 mlTE 緩沖液 (于 15-ml 聚丙烯塑料管) 中,于 37℃ 振搖過夜。


    4) 于巴氏吸管中通過硅烷化玻璃棉過濾上清液。

    注:巴氏吸管中的玻璃棉要預先用約 5 ml 的水浸泡,這很重要。


    5) 用仲丁醇反復抽提濃縮 DNA。


    6) 用二乙醚抽提 DNA—次,用 SpeedVac 旋轉濃縮器真空去除殘留的乙醚。


    7) 用 TE 緩沖液將液體體積調至 180ul


    8) 加 20ul 3mol/LNaOAc 和 2ul 1mol/LMgCl2,震蕩混勻。


    9) 加 600ul 100% 乙醇,顛倒混勻。干冰/乙醇中(-78℃) 冷卻 10 min。混合物室溫下放置 5 min。室溫下微型離心機高速離心 15 min, 沉淀 DNA。


    10) 加 180ulTE 緩沖液,震蕩溶解沉淀。


    11) 加 20ul3mol/LNaOAc 和 2ul1mol/LMgCl2, 震蕩混勻。


    12) 加 600ul100% 乙醇,顛倒混勻。干冰/乙醇中(-78℃) 冷卻 10 min。混合物室溫下放置 5 min。室溫下微型離心機高速離心 15 min, 沉淀 DNA。


    13) 加 800ul75% 乙辭沉淀 DNA, 震蕩混勻。室溫下離心 5 min。


    14) 小心地用 SpeedVac 旋轉濃縮器千燥沉淀(當心: 有時靜電會使沉淀脫離離心管)。


    15) 將 DNA 溶于 TE 緩沖液,儲存于-20℃ 下。


    16) 測量 A260nm 和 A280nm。

    注:對于序列特異性 DNA 親和介質,假定 1A260nm 單位=40ug/mlDNA。

     


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