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  • 發布時間:2019-04-03 22:42 原文鏈接: 氯霉素乙酰基轉移酶(CAT)測定實驗

    通過測定轉染細胞的報告基因表達,如β-gal或CAT,可以確定導人的DNA是否已被整合到宿主細胞主要用于(1)測定基因表達(2)基因整合評價(3)細胞的調控。
    來源于《動物細胞培養:基礎技術指南(第五版)》

    實驗方法原理

    氯霉素乙酰轉移酶報告基因(chloramphenicol acetyltransferase, CAT)能將乙酰基從乙酰輔酶A轉移到氯霉素上。本試劑盒采用熒光測定的方法,檢測CAT活性,它的靈敏度接近同位素測定方法,而操作極為簡便、快捷,成本也大為降低。使用通用裂解緩沖液,能與其他類型的報告基因檢測和蛋白含量檢測兼容。

    實驗材料

    細胞樣本

    試劑、試劑盒

    Tris-緩沖液Tris 三硝基甲苯(Triton)CAT 稀釋緩沖液CAT 酶標準物閃爍液聚丙烯閃爍杯

    儀器、耗材

    微量離心管微量離心機

    實驗步驟

    一、材料


    滅菌物品


    1. D-PBSA

    2. 多孔培養板:6 孔,35 mm


    非消毒物品


    1. Tris-緩沖液:Tris-HCl,0.1mol/L,pH8.0

    2. Tris/三硝基甲苯(Triton):Tris-HCl,0.1mol/L,pH8.0,0.1%TritonX-100,4℃ 儲存

    3. CAT 稀釋緩沖液:Tris-HCl,0.1mol/L,pH8.0,50% 甘油,0.2%BSA

    4. 底物:含 250 mmol/L 氯霉素(GIBCO)的 100% 甲醇;分裝,-70℃ 儲存

    5. 14C-CoA:14C-丁酸輔酶 A(10uCi/mL;AmershamPharmacia)

    6. CAT 酶標準物:制備含 0.2、1.0、2.0、4.0、10U/mL 標準液的 CAT 稀釋緩沖液,4℃ 儲存

    7.「雞尾酒」閃爍液:Econofluor(Invitrogen)

    8. 去離子蒸餾水(DDW)

    9. 聚丙烯閃爍杯:3.5 mL

    10. 微量離心管

    11. 微量離心機

    12. 冰浴

    方法A:6 孔、35 mm 培養板上的細胞收集

    1. 轉染后 24~72 h,用 D-PBSA 液洗滌細胞。

    2. 將培養板置于冰上,每孔中加入 1 mL 的 Tris/Triton。

    3. 將培養板-70℃ 冷凍 2 h。

    4. 于 37℃ 下解凍培養板,然后將其置于冰上。

    5. 將細胞裂解物移至微量離心管中,以最大速度離心 5 min。

    6. 收集上清液,65℃ 加熱 10 min,以滅活 CAT 抑制物質。

    7. 最大速度離心 3 min 后收集上清液(細胞裂解物),將上清液保存在-70℃。


    方法 B:CAT 測定


    8. 從每一樣品中取 5~150uL 細胞裂解物,移至一個 3.5 mL 多聚丙烯閃爍杯中,并且加入足夠的 0.1mol/L Tris,終末體積為 150uL。

    9. 設空白杯,加入 150uL 0.1mol/LTris 液,作為陰性對照。

    10. 陽性對照:
    (a)取 5 個閃爍杯,各加入 150uL 0.1mol/LTris。
    (b)將 5uL 的 CAT 標準液加入到每個閃爍杯中,繪制 1、5、10、20、50mU 的 CAT 標準曲線。

    11. 在所有樣品杯(包括對照)中,加入 100uL 以下混合液:
    (a)84uL 超純水
    (b)10uL 0.1mol/LTris
    (c)1uL 的氯霉素
    (d)5uL(50nCi)的 14C-CoA

    12. 擰緊杯蓋,于 37℃ 下孵育 2 h。

    13. 向所有閃爍杯中加入 3 mL Econofluor,擰緊杯蓋。

    14. 上下倒置混勻閃爍杯中成分。

    15. 室溫下孵育 2 h。

    16. 在一個液閃計數儀上測定 30s 閃爍次數。                                                                  

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    注意事項

    1. 在表達質粒擴增與制備一步,要特別注意其純度(不能含RNA和染色體DNA)以免影響轉化效率


    2. 制備方法最好選用溶菌酶加Triton10,然后氯化艷梯度離心。


    3. 一定要有對照組用CAT酶代替細胞提取液,來驗證反應及層析等過程的可行性,或用Psv:CAT和Psv。cAT表達質粒驗證轉化及重組兩步的正確性。


    4. 在制備細胞提取液中最好選用超聲波破碎法,離心前要注意檢查破碎程度。凍融法繁瑣有時破碎不徹底影響結果。


    5. 4mmol/L乙酞輔酶A可每次取1.smg溶在500川水中,最好用前配制,配制的溶液可保存于一20℃,但不可超過十天。

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    其他

    成功地組裝表達質粒是該項檢測技術的關鍵之一,表達DNA質粒必須具有下列幾種元件:(1)供細胞復制的原核編碼順序和供啼選用的標記基因(抗菌素基因);(2)控制真核細胞轉錄的調控元件(增強子、啟動子);(3)控制轉錄后的一些信號,轉錄加工裁剪信號,加尾信號,供在哺乳動物表達中用;(4)未知待測基因順序可取代上述的轉錄調控順序;(5)標記基因(氯霉素乙酸轉移酶)。


    參考:
    1、《動物細胞培養:基礎技術指南(第五版)》;
    2、《霉素乙酞轉移酶檢測(CATassay)基礎醫學與臨床》

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