標本的保存
血清（漿）
HBV：分離出的血清（漿）如不立即提取核酸，保存于-20℃待檢。
HCV：盡快分離血清(漿), 如不立即提取RNA， 保存于-20℃待檢。
長期保存：吸取200μl血清，加20u RNasin（RNA酶抑制劑），保存于-70℃。
已發出結果報告的標本應及時轉移至冰箱保存，并由專人負責管理，保存1-2周（時間長短根據報告單上的承諾而定）。
全血標本
全血標本如用于DNA提取，可4℃下短期保存（數天），時間長易降解，如用于RNA檢測，應在取血后盡快提取RNA。
最好將DNA或RNA提取后，置-70℃保存。
痰
液化的痰標本如不立即用于核酸提取，可保存于-20℃。
處理后的棉拭子、體液、膿液如不立即用于核酸提取，可保存于-20℃。
組織
新鮮組織最好保存于50%乙醇中，具體方法：先用生理鹽水將組織洗一次，切成小塊，加入適量生理鹽水，然后邊搖邊加入無水乙醇至終濃度為50%，這樣固定的組織標本室溫下可保存數日，4℃可保存6年。
總而言之，標本的保存及適當的預處理對核酸模板的成功提取具有決定性作用。要強調的是，所有用于上述處理的容器如試管或離心管，均應在使用前壓滅菌。
核酸的提取
核酸包括DNA、RNA兩種分子，在細胞中都是以與蛋白質結合的狀態存在，核酸提取的主要步驟為：
裂解細胞
去除與核酸結合的蛋白質以及多糖、脂類等生物大分子，去除其他不需要的核酸分子，如提取DNA分子時，應去除RNA，反之亦然。
沉淀核酸
純化核酸，去除鹽類，有機劑等雜質
(一)DNA提取的經典方法
DNA提取的經典方法，即所謂的酚-氯仿提取法。因為使用兩種不同的有機溶劑交替抽提更容易將蛋白除去，提取次序為酚、酚/氯仿（1：1）、氯仿，這種方法提取的DNA純度高、片段大、效果好，缺點是較為繁瑣。
說明：
回收上層水相時，一定不要接觸兩相的界面，以免將蛋白質等物質吸入新離心管。
沉淀DNA，無水乙醇是首選的有機溶劑。另：異丙醇、醋酸鈉等。
70%乙醇漂洗DNA，是為了去除殘余的鹽類，去除過量SDS和酚等雜物，因為SDS在 70%的乙醇中保持溶解狀態，不與DNA共沉淀，從而通過棄上清液去除這種去污劑,避免對以后PCR反應的影響。
TE緩沖液：10mmol/L Tris-Hcl
1mmol/L EDTA pH 8.5或 8
RNA的提取
RNA提取條件較DNA要求嚴格，主要是因為臨床標本及實驗室環境中，存在大量對RNA有強烈降解作用RNase。 RNase是一類生物活性非常穩定的酶類。這種酶耐酸、耐堿、耐高溫，如煮沸也不能使之完全失活。
蛋白質變性劑可使之暫時失活，但變性劑去除后，又可恢復活性。除細胞內RNase以外，環境中灰塵、各種實驗器皿和試劑、人體的汗液及唾液中均存在RNase，因此在提取RNA時，關鍵要避免 RNase對標本的污染及防止RNase對提取的RNA的降解。
1．提取RNA所用器皿的處理及溶液的準備
塑料制品：如試管、EP管、Tip頭，使用滅菌的一次性用品。
玻璃用品：如燒杯、試管和其他用品，常被RNase污染，使用前必須于180oC干燥8小時以上，或用0.1%DEPC水(焦碳酸二乙酯)浸泡處理。
DEPC 是RNase的強抑制劑，作用機制是通過與蛋白質中的組氨酸結合，使蛋白質變性。37℃浸泡2小時，然后用滅菌水漂洗數次，于100℃干烤15分鐘，去除器皿上殘余DEPC。
所需溶液的配制：必須用高壓滅菌的水和RNA提取專用的化學試劑配制溶液，用干烤過的藥匙稱取試劑，把溶液裝入無 RNase的玻璃器皿。
嚴格來說，所有溶液均應用0.1%DEPC于37℃處理12小時以上，然后于100℃加熱15分鐘或高壓滅菌15分鐘，去除殘余DEPC。
2．RNA提取中RNase污染的控制
最主要的潛在污染源是操作人員的手，手直接觸摸之處毫無疑問會留下 RNase，另外，說話帶出的唾液也富含RNase，故在涉及RNA的一切操作過程中，都應戴一次性手套和口罩。
實驗中，如接觸了“臟的”玻璃器皿和其他物品以后，手套就可能污染RNase，因此RNA提取實驗中，應勤換手套。