上皮細胞培養
1）表皮細胞培養
1．取材：取外科植皮或手術殘余皮膚小塊，以角化層薄者為佳，早產流產兒皮膚更好，切成0.5～1 平方厘米小塊。
2．EDTA 處理：先置入0.02％EDTA 中室溫置5 分鐘。
3．冷消化：換入0.25％胰蛋白酶中，置4℃過夜。
4．分離：取出皮膚，用血管鉗或鑷子把表皮與真皮層分開。
5．溫消化：取出表皮單獨處理，用剪刀剪成更小的塊后，置入新的0.25％胰蛋白酶中，37℃再消化30～60 分鐘。
6．用吸管輕輕反復吹打，使成細胞懸液。
7．培養液：通過80 目不銹鋼紗網濾過后，低速離心，吸上清，直接加入Eagle液和20％小牛血清，制成細胞懸液，接種入碟皿中，CO2 溫箱培養。
2） 乳腺組織培養
直接培養法：（適于培養含纖維少的軟組織）
1．在含有少量培養液或Hanks 液的容器中，用鋒利刀片將組織反復切割成碎塊。
2．把組織碎塊連同液體注入離心管中，再補加少許培養液，用吸管吹打片刻，置試管架3～5 分鐘。吸除上層液可排除非乳腺細胞部分。重復2～3 次。
3．末次處理結束后，向沉降管中再補加培養液，用吸管稍吹打，使沉降物重懸。不待細胞團塊下降立即通過3～4 層無菌紗布濾入另管中。
4．調整好適宜密度，接種入培養瓶中培養。
膠原酶消化法：（適于處理含纖維多的較硬組織）
其過程與培養其它組織相同。
3） 胃上皮細胞培養
1．取材：取胃潰瘍或胃癌手術切除胃標本遠端非病變區粘膜少許。
2．清洗：用含慶大霉素（400 微克/毫升）和二性霉素（2 微克/毫升的Hanks）液漂洗后，用鈍器剝離下粘膜，剪成1mm3 大小。
3．消化：在I 型膠原酶和透明質酸酶中，于37℃中消化80 分鐘。
4．離心：收集細胞懸液，800 轉/分離心后，Hanks 液漂洗兩次。
5．接種：末次離心后加入含有1％～2％胎牛血清的完全培養基，接種入不同孔數的培養板中，接種量依不同實驗目的而定。
4） 肝細胞培養
初代組織塊培養：
取新鮮肝臟，先剝除被膜和血管等纖維成分，用刀或剪刀把肝臟剪成1mm3 左右的小塊，采用帖壁培養法。
初代消化法培養：
1．把肝組織切成2～4 立方毫米的小塊，用不含鈣鎂的BSS 液洗兩次。
2．移入1：1 的0.1％胰蛋白酶和0.1％膠原酶（都用無鈣鎂BSS 配置）中，4℃冷消化10～12 小時后，通過250 微米和64 微米尼龍網或不銹鋼紗網濾過。
3．收集細胞、BSS 液洗1～2 次、計數、接種培養。
消化培養肝細胞的另一種方法是灌流法（肝臟灌流需用全肝，以較小動物如小鼠和大鼠為好）：
1．無菌解剖動物，取出肝臟，先用BSS 洗除血污。
2．取5ml 注射器一支，吸取消化液后，把注射器頭輕輕插入肝管中，用線繩結扎牢固，以防消化液漏出，輕輕把消化液注入肝管系統，并不時輕揉壓肝臟，以便消化液進入肝小葉中；消化液在肝內停留20～30 分后，在吸出消化液的同時并輕揉壓肝臟，以使肝細胞脫落和消化液吸出。
3．待吸凈消化液后，注入離心管中，低速離心分離，用RPMI 1640 培養基培養（較其它培養基為好），能獲得較純的肝上皮細胞和獲較好的效果。
傳代培養：
待細胞生長連接成片后，用BSS 洗一二次，加1：1 的0.025％胰蛋白酶和0.02％ EDTA 混合消化3～5 分鐘，待細胞回縮，便停止消化，棄掉消化液，用BSS洗一二次，注入營養液，吹打，制成細胞懸液，再接種培養。
5）內皮細胞培養
1．取產后的新鮮臍帶。如不立即培養可以保存于4℃中，但不宜超過12 小時。無菌剪取長10～15 厘米一段。其它如胚胎和幼體動物的大血管，亦可用于培養。
2．先用三通注射器吸溫PBS 液注入臍帶的靜脈中，洗除殘血，注入口處宜用線繩結扎，以防液體返流。
3．用血管鉗夾緊臍帶一端，從另端向臍靜脈中徐徐注入最終濃度為0.1％的膠原酶，待末端出現液體后結扎之，令充滿血管，注入口亦應結扎，以防液體返流，消化3～10 分鐘。
4．吸出含有內皮細胞的消化液，注入離心管中，為獲取更多細胞，可再注入溫PBS 沖洗2～3 次徹底清除干凈殘余細胞，一并注入離心管中離心。
5．吸除上清，加1640 培養液，制成細胞懸液，接種入瓶皿中培養，順利時2～3 天內細胞即可長成單層。