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  • 實驗方法原理

    在指數生長中期,用絲裂霉素C處理飼養層細胞,將細胞培養形成匯合的單層。通過膠原蛋白酶消化從活檢標本分離腫瘤細胞,或者用胰蛋白酶消化從原代培養物獲得腫瘤細胞,然后將腫瘤細胞接種到匯合的單層上(圖24.1)。上皮性腫瘤細胞可以在3周至3個月內形成克隆。纖維肉瘤和神經膠質瘤并不總是形成克隆,而可侵入飼養層,并逐漸過渡生長。

    實驗材料

    3T3細胞STO細胞10T1 2 細胞

    試劑、試劑盒

    生長培養液膠原蛋白酶胰蛋白酶

    儀器、耗材

    手術刀Petri 培養皿

    實驗步驟

    一、材料

    無菌 


    1. 飼養層細胞(如 3T3、STO、10T1/2 或 FHS74Int)

    2. 1 mg/ml 絲裂霉素 C(Sigma)

    注意:

    首次使用飼養層細胞時,最好作絲裂霉素 C 的劑量反應曲線,證實這個劑量能使飼養層細胞存活 2~3 周,但使細胞最多進行兩個倍增后不再繼續增殖。在這種情況下,按如下步驟進行:
    (1)將 25 cm2 培養瓶中的細胞用 1~100 μg/ml 絲裂霉素 C 處理過夜(18 h);
    (2)用胰蛋白酶消化細胞后,以 20 ml 新鮮培養液將培養瓶中的全部細胞再接種到 75 cm2 培養瓶中;
    (3)將細胞培養 3 周,每周換液 2 次;
    (4)將細胞染色,檢查存活的克隆。


    2. 生長培養液

    3. 2000 U/ml 膠原蛋白酶,CLS 級(Worthington)或相當級別

    4. 0.25% 胰蛋白酶,用 PBSA 配制

    5. 腫瘤活檢標本或原代培養物

    6. 裝有 22 號刀片的手術刀

    7. Petri 培養皿,用于解剖,同原代培養中的 Petri 培養皿 


    二、操作步驟

    1. 在 6 個 75 cm2 培養瓶中,將飼養層細胞培養至 80% 匯合。


    2. 加入絲裂霉素 C 至合適的終濃度,一般約為 5 μg/ml。


    3. 用絲裂霉素 C 孵育細胞過夜(約 18 h)。


    4. 移出含絲裂霉素 C 的培養液,用新鮮培養液浸洗細胞單層。


    5. 將細胞進一步培養 24~48 h。


    6. 用胰蛋白酶消化細胞,以 5X105 個/ml(1X105 個/cm2)的密度將細胞再接種到 25 cm2 培養瓶中。將細胞培養 24 h。


    7. 如果使用活檢標本,需將標本切開,第 2 步放入膠原酶中。


    8. 將從標本獲得的細胞懸液以 20~100 mg/瓶接種到兩個 25 cm2 培養瓶中,每瓶含 6 ml 細胞懸液。從每個培養瓶中取出 1 ml 懸液,分別放入另外兩個培養瓶中,加培養液至 4 ml。第 3 對培養瓶作為對照,檢查絲裂霉素 C 處理后飼養層細胞的存活能力。                                                                  

    展開


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