| 實驗方法原理 |
Biacore是基于表面等離子體共振(SPR)技術來實時跟蹤在天然狀態下生物分子間的相互作用,無需任何標記物。表面等離子體共振(surface plasmonresonance,SPR)是一種光學現象,在傳感芯片發生全反射界面上有一層約50nm厚的金屬膜,偏振光入射到棱鏡的一端,在棱鏡與金屬膜的界面會產生表面等離子波,當入射光波的傳播常數與表面等離子波的傳播常數匹配時,金屬膜內的自由電子會產生共振,即表面等離子共振體。 分析時,先將一種生物分子即配體(蛋白、抗體等)偶聯在生物傳感器表面,再將含有另一種能與靶分子產生相互作用的生物分子(分析物)的溶液注入并流經生物傳感器表面。生物分子間的結合引起生物傳感器表面質量的增加,導致折射率的變化,通過監測SPR的角度變化,可自動獲得分析物的動力學結合和解離常數、親和力及特異性等。生物分子間反應的變化即被觀察到。 |
|---|---|
| 實驗材料 | 蛋白樣品 |
| 試劑、試劑盒 | EDC 氨基乙醇 Extraclean HEPES 緩沖的鹽水緩沖液 HCl NHS 小鼠抗-TSH 單克隆抗體 兔抗小鼠-Fc 結構域 TSH TSH 稀釋液 |
| 儀器、耗材 | BIAcore 儀器 CM-5 傳感芯片 |
| 實驗步驟 |
第一階段 捕獲表面的制備和結合試驗 展開 |
| 注意事項 |
樣本的要求 1. 通過等電聚焦或者使用軟件預測,確定待分析蛋白的等電點。對等電點高于7或者小于3的蛋白一般不推薦進行 Biacore 分析,特殊需求可與相關技術人 員進行個例商討。 2. 固定于傳感片上的靶蛋白(例如:受體蛋白)和待分析蛋白,純度要達到95%以上。 3. 用 PBS(或者用戶蛋白所需的特殊緩沖液)對蛋白溶液進行透析,然后濃縮至 200ug/ml~1mg/ml 的濃度。 4. 化合物溶解在含 1‰ DMSO 的 HBS 緩沖液中,并稀釋成 10-5M 和 10-6M 兩種濃度進行初步分析;初步分析呈陽性的化合物再用含 1‰ DMSO 的緩沖液稀釋成 10-5M, 5×10-6M, 2×10-6M, 1×10-6M, 5×10-7M 和 1×10-7M 的濃度梯度進行動力學常數分析。 5. 如果化合物無法溶解在含 1‰ DMSO 的 HBS 緩沖液中,則可以提高 DMSO的濃度,最高可至 1%的濃度。同時配制相應濃度的DMSO 緩沖液作為對照進行實驗。
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| 其他 |
本實驗來源于分子克隆實驗指南(第三版)下冊,作者:〔美〕J. 薩姆布魯克 D.W. 拉塞爾。
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